根据其大小，又分为1.5ml、2ml、5ml、10ml、15ml、50ml等，国产的离心管一般就是这几个规格，用的较多的也就是10ml和50ml的。如果您的离心机是配30ml或者其他规格的离心管时，就要考虑进口的了。另外，离心管还有圆底和尖底，以及螺旋盖和插盖之分。螺旋盖的离心管带有较精细的刻度，插盖的只有一个总体的容量标示。实验室常用的离心管有塑料的和玻璃的，一般塑料的用的较多，因为玻璃的离心管不能用在高速或者超速离心机上。塑料的离心管又有PP（聚丙烯）、PC(聚碳酸酯)，PE(聚乙烯)等材质。PP的管子性能相对来说比较好。塑料的离心管透明或者半透明，可以直观的看到样品离心情况，但是比较容易变形，抗有机溶剂的腐蚀性较差，所以使用寿命较短。因此，实验室一般会经常购买离心管。使用超滤离心管时应注意保持其清洁和卫生，并定期更换超滤膜以确保较佳效果。绍兴100K超滤离心管厂商
超滤管采用其特有的再生纤维素膜，定义为：一个确定NMWL 的超滤膜应该截留至少90% 以上的这个大小的球形分子，即100kDa的球形蛋白用100k的再生纤维素膜得率超过90%。请仔细查看以下默克生命科学官方数据：(以0.5mL的AU0.5为例，其它型号截留分子量的选择原则一致，具体离心力和离心时间不同。截留分子量选小啦！看到这个表，你是否发现原来抱怨超滤管流速偏慢的根源来自对于截留分子量定义的误解。膜孔径要小于目的分子这是一原则。如果分子有近似球形的立体结构(而非明显的线性分子)，在再生纤维素超滤膜体系内，选择“等于”或“略小于”目的分子的截留分子量的超滤管是较佳选择，这样操作起来又快又好，既保证了样品回收率，又缩短了离心时间，大幅降低大分子损伤风险。绍兴100K超滤离心管厂商使用超滤离心管时应注意避免振动或震动造成样品混乱并影响分离效果。
超滤离心管，备有四种材质的超滤膜：聚醚砜、三醋酸纤维素、再生纤维素和Hydrosart，可根据不同要求灵活选用。 使用注意事项 （1）选择合适的超滤管。通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量为35kDa，就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。若目的蛋白分子量为10kD左右，则可以用截留分子量3kD的超滤管。认真阅读使用说明书，注意超滤膜对各种化学物质的耐受程度有所不同。 （2）新买来的超滤是干燥的，使用前加入超纯水，水量完全过膜，冰浴或冰箱里预冷几分钟。然后将水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超过管顶的白线为准。操作要轻，加入蛋白液前，超滤管需要插在冰上预冷。 （3）平衡。质量和重心二者都要达到平衡。注意转速和加速度不可太快，否则直接损坏超滤膜。开始离心超滤（离心机预冷至4度）。不同离心机的转速 rpm换算成g之后，有所不同。离心机的加速度调至较低档，减小对膜的压力。
实验室常用的离心管有塑料的和玻璃的，一般塑料的用得较多，因为玻璃的离心管不能用在高速或者超速离心机上。塑料的离心管又有PC (聚碳酸酯)、PE (聚乙烯)、PP（聚丙烯）等材质。PP的管子性能相对来说比较好。塑料的离心管透明或者半透明，可以直观地看到样品的离心情况，但是比较容易变形，抗有机溶剂的腐蚀性较差，所以使用寿命较短。因此，实验室一般会经常购买离心管。PC (聚碳酸酯):透明度较好，硬度大，可以高温消毒，但不耐强酸强碱以及一些有机溶剂如酒精之类。主要用于5万转以上的超高速离心。PE（聚乙烯）:不透明。和丙铜、醋酸、盐酸等不反应，较为稳定，高温下容易变软。PP（聚丙烯）:半透明，化学及温度稳定性较好，但是在低温下会变脆，所以在离心时不要在4℃以下。使用超滤离心管时应注意保持样品干燥、无污染和清洁。
使用后用0.1M NaOH泡24h，然后20%乙醇浸泡保存。这个我是听老板们说的，的确乙醇泡完后孔径会增大，基本就是5-10KD较大，也就是说如果你的蛋白在21KD以上，应该没问题。或者可以不用乙醇泡，用NaOH洗之后直接用无菌水保存，每周换一下液体，应该没有问题。看看说明书不就结了！我原来在CRO的时候一直是重复用的，也没见什么不好啊！短期会用的话，用20%的乙醇泡着，回头拼命用millipore的水充干净，然后在用样品缓冲液平衡一下就好，至于有些人说的改变孔径，也没那么大影响的，你至少跟目的蛋白分子量差别3倍的截留分子量才安全的不是吗?1个月以内不用的话，建议用100mM的NaOH保存！更长时间的话加0.02%的叠氮钠，但那个东西强致疾病物，不建议使用。理论上截留目标物，孔径应选1/3~1/5的膜；透过目标物，孔径应选5-10倍的膜。超滤离心管利用离心力和超滤膜将分子分离和过滤出来。河北30K超滤离心管厂商
使用前应先对超滤膜进行湿润化处理，以免损坏其结构并保证较佳效果。绍兴100K超滤离心管厂商
离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的缓冲溶液，直到蛋白不发生沉淀为止。用以浓缩蛋白，如果要换Buffer，在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候，轻轻加入新的Buffer（经0.22um超滤膜超滤），再浓缩至1ml左右，连续三次，之后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定，一般不多于500ul，也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍左右的体积浓缩算，三次达到1000倍以上，基本上可以达到换buffer的目的。绍兴100K超滤离心管厂商