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上海Co IP免疫沉淀实验视频
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发布时间：2024年06月09日
免疫沉淀技术（Immunoprecipitation, IP）的实验方法通常包括以下步骤：
1. 样本准备
2. 蛋白质浓度测定：使用BCA、Bradford或Lowry等方法测定裂解液中蛋白质的浓度。
3. 抗体预处理：如果使用预固定的抗体，需先将抗体固定在固相支持物上，如琼脂糖珠或磁性微珠。
4. 免疫沉淀反应：将裂解液与特异性抗体（固定或未固定）混合，并在4°C下缓慢摇晃孵育过夜，以允许抗体与目标蛋白质充分结合。
5. 固相支持物的回收：对于未固定的抗体，加入与抗体特异性结合的蛋白A或蛋白G结合的固相支持物。
6. 洗涤：去除未结合的蛋白质和杂质，通常需要多次洗涤固相支持物。
7. 洗脱：使用适当的洗脱缓冲液（如加热的SDS加载缓冲液或酸性缓冲液）从固相支持物上洗脱免疫复合物。
8. 后续分析：对洗脱的蛋白质进行SDS-PAGE电泳、Western Blot、质谱分析等，以进一步分析目标蛋白质。
免疫沉淀选琼脂糖珠还是磁珠？上海Co IP免疫沉淀实验视频
免疫沉淀实验中磁珠还是琼脂糖珠的选择取决于客户实验情况。
琼脂糖珠海绵状的结构 (直径 50-150 μm) 可以结合抗体 (继而结合靶蛋白) ，它能够直接高效、快速结合抗体，而不需借助特殊的专业设备。琼脂糖珠呈多孔结构，这使得它们拥有更大的表面积可与蛋白质相互接触，具有更高的结合载量。
与琼脂糖珠不同，磁珠是固体，抗体的结合限于磁珠的表面。磁珠 (直径 1-4 μm) 明显小于琼脂糖珠 ，尽管磁珠没有多孔中心增加结合能力，但每体积的磁珠数量比琼脂糖珠多，使磁珠拥有足够的抗体结合表面积满足高容量的抗体结合。
简而言之，琼脂糖珠的结合能力较强，而磁珠在得率，可重复性以及自动化方面有明显的优势。
上海Co IP免疫沉淀实验视频免疫沉淀的原理是什么？
免疫沉淀技术（Immunoprecipitation, IP）是一种用于研究蛋白质相互作用和蛋白质特性的重要方法。它具有一些明显的优点，但也存在一些局限性。
优点:
1. 特异性强：IP技术利用特异性抗体对目标蛋白进行捕获，因此具有很高的特异性。
2. 富集低丰度蛋白：可以从小量样本中富集低丰度的目标蛋白，有助于研究稀有蛋白。
3. 研究蛋白质相互作用：通过Co-IP等变体技术，可以研究蛋白质之间的相互作用。
4. 操作简便：IP实验步骤相对简单，容易在实验室中实施。
缺点:
1. 对抗体质量依赖性高：需要高质量的特异性抗体，否则可能导致假阳性或实验失败。
2. 存在非特异性结合：样本中的其他蛋白质可能非特异性地结合到抗体或固相载体上。
3. 可能破坏蛋白质的天然构象：裂解和洗涤步骤可能破坏蛋白质的天然结构，影响其功能。
4. 可能存在背景噪声：非特异性结合可能导致背景噪声，影响结果的清晰度和解释。
免疫沉淀技术RIP（RNA Immunoprecipitation，RNA免疫沉淀）的实验方法基于以下几个关键步骤：
1. 细胞裂解：首先，细胞或组织样本被裂解，以释放细胞内的蛋白质和RNA复合物。
2.抗体特异性结合：裂解后的样本中加入针对特定RNA结合蛋白的抗体。这些抗体能够特异性地识别并结合到目标蛋白。
3. 免疫复合物形成：抗体与目标蛋白结合后，形成抗体-蛋白质-RNA复合物。
4. 亲和介质捕获：使用蛋白A或蛋白G结合的珠子（如琼脂糖或磁性珠子）来捕获这些抗体-蛋白质-RNA复合物。蛋白A或蛋白G能够与抗体的Fc部分结合，从而拉下与之结合的复合物。
5. 洗涤：捕获的复合物被洗涤以去除未特异性结合的蛋白质和RNA。
6. RNA分离和分析：从珠子上洗脱或消化复合物，分离出RNA，并进行进一步的分析，如qPCR、Northern blot或高通量测序（RNA-Seq）。
免疫沉淀技术ChIP的原理是什么？
免疫沉淀技术（Immunoprecipitation, IP）的实验设计通常包括以下几个关键步骤：
1. 目标蛋白质的选择：
2. 抗体的选择：选择特异性强、亲和力高的抗体来捕获目标蛋白质
3. 样本的准备：收集和准备细胞或组织样本。
4. 蛋白质的裂解和释放：选择合适的裂解条件，如pH值、离子强度、去污剂等。
5. 蛋白质浓度的测定：确定裂解液中蛋白质的浓度，以便于后续步骤的标准化。
6. 免疫沉淀的操作：将特异性抗体与裂解液混合，并在适宜的条件下孵育，以形成抗体-抗原复合物。
7. 非特异性结合的减少：通过预纯化步骤去除可能的非特异性结合蛋白。
8. 洗涤：多次洗涤以去除未结合的蛋白质和杂质。
9. 目标蛋白质的洗脱：使用适当的缓冲液洗脱抗体-抗原复合物。
10. 后续分析：对洗脱的蛋白质进行进一步分析，如Western Blot.
11. 对照实验：设计适当的正对照和负对照，以评估实验的特异性和敏感性。
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免疫沉淀技术（Immunoprecipitation, IP）是一种用于研究蛋白质相互作用和纯化特定蛋白质的实验方法。
优点:
1. 特异性强：利用特异性抗体捕获目标蛋白，可以有效地从复杂的生物样本中分离出感兴趣的蛋白质。
2. 灵敏度高：可以检测到低丰度的蛋白质，包括瞬态或弱相互作用的蛋白质复合物。
3. 应用范围广：适用于多种生物样本，如细胞裂解物、组织提取物和生物流体。
4. 生物学洞察深入：能够揭示蛋白质之间的相互作用网络，有助于理解细胞内的信号传递和调控机制。
5. 可与其他技术联用：如与质谱（IP-MS）联用，可以准确鉴定蛋白质及其相互作用伙伴。
缺点:
1. 对抗体依赖性高：需要高亲和力和高特异性的抗体，抗体的质量直接影响实验结果。
2. 可能存在非特异性结合：样本中的其他蛋白质可能与抗体或固相支持物发生非特异性结合，导致背景噪音。
3. 可能影响蛋白质的天然状态：裂解和沉淀过程可能会改变蛋白质的构象和功能。
4. 实验重复性：需要多次实验来确保结果的可重复性和可靠性。
5. 样品处理：需要避免样品降解和非特异性结合，这可能需要使用蛋白酶抑制剂和适当的缓冲液条件。
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