静息状态下大部分神经元细胞内钙离子浓度约为50-100nM,而细胞兴奋时钙离子浓度能瞬间上升10-100倍,增加的钙离子对于突触囊泡胞吐释放神经递质的过程必不可少。众所周知,只有游离钙才具有生物学活性,而细胞质内钙离子浓度由钙离子的内外流平衡所决定,同时也受钙结合蛋白的影响。细胞外钙离子内流的方式有很多种,其中包括电压门控钙离子通道、离子型谷氨酰胺受体、烟碱型胆碱能受体(nAChR)和瞬时受体电位C型通道(TRPC)等。神经元钙成像的原理就是利用特殊的荧光染料或钙离子指示剂将神经元中钙离子浓度的变化通过荧光强度表现出来,以反映神经元活性。该方法可以同时观察多个功能或位置相关的脑细胞。细胞内钙成像技术是通过向细胞内载入钙指示剂。神经元钙成像
对新环境的探索确保了生存和进化的适应性,这是通过根据经验动态变化的探索性回合和逮捕来表达的。因此,调节探索性行为的神经环路应该参与经验的整合,并利用它来选择适当的行为输出。通过空间探索分析,研究人员发现在之前动物被逮捕的地点,瞬间逮捕数随着经验的增加而增加。在自由探索的小鼠身上进行的Inscopix钙成像显示,基底外侧杏仁核中有一个遗传和投射定义的神经元群,在自我控制的行为停止期间是活跃的。这个合集是以经验依赖的方式响应的,对这些神经元的nVoke闭环光遗传操作表明,它们在探索过程中驱动经验依赖的逮捕是充分和必要的。投影特异性成像和光遗传学实验显示,这些yizhi是由投射到**杏仁核的基底外侧杏仁核神经元影响的,揭示了杏仁核环路,该回路介导了熟悉部位的短暂阻止,但不影响回避或焦虑/恐惧样行为。重庆inscopix钙成像价格多少钙成像相关仪器设备设计团队一直在研究并提高系统成像帧速、系统信号水平。
可见光激发Ca2+荧光探针:与紫外光激发探针相比,可见光激发Ca2+探针具有更强的染料吸收性能,对Ca2+变化水平检测敏感度也更高,能够降低对活细胞的光毒性和样品自发荧光以及光散射的干扰,且无光谱偏移。较常使用的可见光激发Ca2+荧光探针有Fluo-3,Fluo-4,Rhod-2等,同时他们也都是非比率型指示剂。Fluo-3是较常用的可见光激发Ca2+荧光指示剂之一,是典型的的单波长指示剂,比较大激发波长为506nm,比较大发射波长为526nm。它与Ca2+结合之前几乎无荧光,结合后荧光会增加60至100倍,从而避免了细胞自身的荧光干扰。实际检测时推荐使用的激发波长为488nm左右,发射波长为525~530nm(图3)。Fluo-3可以用在激光共聚焦显微成像或流式细胞仪中。它还有一个升级版本Fluo-4,在相同Ca2+浓度下信号更强。
钙离子成像系统:传统的宽场荧光显微镜由于光散射的影响,只能够对大脑浅层的神经元或在离体组织上进行成像,共聚焦显微镜由于光损伤较大,一般也只用于离体钙成像。随着荧光显微镜技术的迅速发展,在体钙成像技术得到了蓬勃发展。双光子荧光显微镜能够在进行成像的时候实现高分辨率和高信噪比。例如,用双光子显微镜对海马树突棘的钙离子信号进行成像,研究神经元突触后长时程控制(Wangetal.,2000);观察小鼠运动皮层神经元在嗅觉选择任务中刺激相关电位(Komiyamaetal.,2010)等等。不过,这些实验还是需要对动物进行麻醉和固定,而神经科学领域很多研究更希望能够对自由活动的动物进行研究。近年来出现了通过植入性的microscope或microlens进行freelymoving动物钙成像的技术。如图6中所示的光纤成像法:使用一端带有GRINlens的光纤连接显微镜和动物大脑,从特定脑区发出的荧光信号被光纤收集,然后通过相机成像。动物头部只需植入GRINlens,方便活动,而且可以同时植入多个lens来观察不同的脑区之间的联系和相互作用。不过这种成像方法的视野较小,分辨率也比较差。钙信号在神经元功能调控及信息传递方面发挥着重要作用。
钙成像技术通常使用荧光染料或报告基因来标记细胞中的钙离子。当细胞受到外界刺激时,钙离子会进入细胞内,导致荧光染料或报告基因发出光信号。通过观察光信号的强度和分布,可以推断出钙离子的浓度和分布情况。钙成像技术具有以下优点:高灵敏度:可以检测到细胞内微小的钙离子浓度变化。实时性:可以实时记录钙离子浓度的变化过程。空间分辨率高:可以清晰地观察到钙离子在细胞内的分布情况。无创性:可以通过huo体成像技术观察动物体内的钙离子变化情况。可重复性:可以对同一群体细胞进行多次成像,以评估不同处理或刺激的影响。总之,钙成像技术是一种强大的生物医学研究工具,可以帮助科学家们更好地了解细胞生理和病理状态,为疾病诊断和zhi疗提供有力支持。钙成像系统具有单细胞分辨率的大视野的特征。宁波细胞钙离子钙成像口碑好
传统的钙成像技术受限于显微镜的视野,只能对很小的一片区域进行记录。神经元钙成像
哺乳动物进入睡眠后神经元活动发生了戏剧性的变化,觉醒的神经元活动被认为会增加睡眠需求。其他脑细胞(胶质细胞)在自然睡眠-觉醒周期中的变化以及它们在睡眠调节中的作用相对来说还没有被研究过。华盛顿州立大学ElsonS.Floyd医学院生物医学系的MarcosG.Frank研究团队于2020年9月24日在CurrentBiology上发表论文“ARoleforAstroglialCalciuminMammalianSleepandSleepRegulation”,通过使用滔博生物-Inscopix自由活动钙成像显微镜发现额叶皮层的星形胶质细胞钙浓度随睡眠和清醒而变化,会在睡眠剥夺后改变,并调节睡眠需求。神经元钙成像