珠海细胞高效转染试剂

细胞转染效率低下的几个大坑：1.准备不足做脂质体转染的时候，在开展正式实验前要多做预试验，优化转染条件。优化转染条件包括：脂质体的用量、DNA密度、细胞密度、脂质体和DNA混合孵育时间等等。2.电压过大做电转的时候，如果电压太大，往往会发生细胞大量死亡的情况。不同的细胞，需要的电压是不一样的。这就要求我们多做预实验，多摸索条件。对于大多数细胞来说，其较佳电压位于250-1250v/cm。另外，就是进行转染的细胞应该处于对数生长期。处于对数生长期的细胞的抗损伤能力是较强的。细胞浓度应该处于5x106到1x107／mL之间。每次转染的质粒应该控制在4-6μg，如果﹥10μg，转染效率也较大降低。一般的瞬时转染 方法多采用脂质体法。珠海细胞高效转染试剂

细胞转染的常用方法：细菌转染：原理：对于用脂质体不能实现转染的细胞，可以采用细菌转染。可用于蛋白质过表达或克制，是临床研究中较常用的方法。它通过侵染宿主细胞将外源基因整合到染色体中，可用于难转染细胞、原代细胞的稳定性转染。实验步骤：通过基因克隆生成重组细菌→采用非细菌法转染包装细胞系，扩增并分离得到重组细菌颗粒→纯化并滴定细菌液→转导目的细胞（含有细菌特异性的受体）→去除培养物中的细菌，并加入新鲜培养基→分析细胞瞬时基因表达或沉默情况。珠海细胞高效转染试剂震荡后将试剂放在－20摄氏度保存，使用前还需震荡。

细胞转染的常用方法：人工脂质体法原理：带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物，进而可被细胞内吞稳定转染/瞬时性转染。这种方法几乎适用于所有细胞，转染效率高、重复型好，但转染时需要去除血清，转染效果随细胞类型变化大。实验步骤：在单独试管中分别稀释核酸及转染试剂→脂质体与核酸的磷酸骨架结合，形成复合物→脂质体上的正电荷有助于复合物与细胞膜结合→复合物通过内吞作用进入胞浆→分析细胞瞬时基因表达或沉默情况。

细胞转染方法：1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷，能与核酸的磷酸根通过静电作用，将DNA分子包裹入内，形成DNA脂复合物，也能被表面带负电的细胞膜吸附，再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中，是目前实验室较方便的转染方法之一，其转染率较高，优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性，所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型：cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内，这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下，高电场强度会杀死50%-70%的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂，可以较大的降低细胞的死亡率，同时提高电穿孔转染效率。瞬时和稳定表达DNA转染后，转入基因的表达可以在1－4天内检测到。

如何有效提高细胞转染实验效率：1.选择合适的转染试剂不同细胞系转染效率通常不同，但细胞系的选择通常是根据实验的需要，因此在转染实验前应根据实验要求和细胞特性选择适合的转染试剂。每种转染试剂都会提供一些已经成功转染的细胞株列表和文献，通过这些资料可选择较适合实验设计的转染试剂。当然，较适合的是高效、低毒、方便、廉价的转染试剂。2.保持较佳的细胞状态一般低的细胞代数（<50）能确保基因型不变。较适合转染的细胞是经过几次传代后达到指数生长期的细胞，细胞生长旺盛，较容易转染。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变，总染色体重组或基因调控变化等而演化。这会导致和转染相关的细胞行为的变化。也就是说同一种系的细胞株，在各实验室不同培养条件下，其生物学性状发生不同程度的改变，导致其转染特性也发生变化。因此，如果发现转染效率降低，可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。是目前实验室较方便的转染方法之一，其转染率较高，优于磷酸钙法。开封细胞高效转染试剂进货价

转染技术转染是将外源遗传物质导入真核细胞的过程，是细胞和分子生物学研究的重要工具。珠海细胞高效转染试剂

细胞转染效率低下的几个大坑：1.细胞污染细胞污染也是造成细胞死亡，转染效率低下的一大原因。首先，转染细胞用的质粒必须保证无菌。而现在市场上的一般的质粒提取试剂盒都做不到较全无菌。毛博这里再贡献一个独门绝招：将提完质粒后或者提的较后一步，用75％乙醇沉淀，这样就除菌了。2.质粒不行转染用的质粒首先要保证数量，一般为2μg以上。质粒纯度不够或者含有细菌LPS或其他对细胞有毒害作用的物质，也会影响转染效率。这个时候，就应该对质粒进行纯化和浓缩。珠海细胞高效转染试剂