荧光抗体技术:抗原抗体反应后,利用荧光显微镜判定结果的检测方法。免疫荧光测定:抗原抗体反应后,利用特殊仪器测定荧光强度而推算被测物浓度的检测方法。免疫荧光实验步骤:直接法测抗原:基本原理:将荧光素标记在相应的抗体上,直接与相应抗原反应。其优点是方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少。缺点是敏感性偏低;而且每检查一种抗原就需要制备一种荧光抗体。此法常用于细菌、病毒等微生物的快速检查和肾炎活检、皮肤活检的免疫病理检查。免疫荧光技术可以同时检测多个目标分子,通过不同颜色的荧光染料进行标记。HMGB1免疫

细胞的固定及免疫荧光:1)吸除培养基,一般先加入PBS浸洗细胞 3 次,每次 5 min。2)向孔内加入4%多聚甲醛1ml,进行细胞固定,室温固定20分钟。3)吸去多聚甲醛,使用PBS浸洗 3 次,每次 5 min。4)向孔内加入0.5%Triton X-100(PBS配制)室温通透20min,目的是使细胞通透。5) 除去Triton X-100,使用PBS浸洗 3 次,每次 5 min。6)用10%的与二抗同源的山羊血清(PBS配制)或者5%BSA封闭2小时(选择的封闭液与后面操作过程中抗体稀释液一致)。封闭后不需要用PBS清洗。7)吸去封闭液,向每孔滴加足够量适宜浓度的一抗(一次使用抗体可以根据抗体说明书推荐浓度,后续实验可以摸索抗体的适宜浓度),4℃湿盒内孵育过夜。CD36免疫荧光检查免疫荧光技术是一种以荧光素标记抗体来定位抗原物质的高度发达的标记免疫技术。

免疫荧光实验的注意事项:对荧光标记的抗体的稀释,要保证抗体的蛋白有一定的浓度,一般稀释度不应超过1:20,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化,染色时间可以从10min到数小时,一般30min已足够。染色温度多采用室温(25℃左右),高于37℃可加强染色效果,但对不耐热的抗原(如流行性乙型脑炎病毒)可采用0-2℃的低温,延长染色时间。低温染色过夜较37℃30min效果好的多。
直接免疫荧光:单抗体(一抗)用于免疫染色和检测目标蛋白。荧光素结合的一抗直接与目标抗原结合,并使用成像显微镜观察。直接免疫荧光的优点:由于无需为两种抗体选择不同的物种反应性,从而降低了物种交叉反应性问题。与间接免疫荧光相比,时间缩短(操作步骤减少)。直接免疫荧光的缺点:不允许通过二抗进行信号放大;检测灵敏度降低;荧光素结合一抗的选择有限;与使用荧光二抗的检测相比,更昂贵。间接免疫荧光:使用两种抗体(一抗和二抗)进行免疫染色并检测目标蛋白。首先,用特异性一抗标记目标蛋白。然后,荧光素结合的二抗(与一抗具有不同的物种反应性)识别结合的抗原-抗体复合物并与一抗结合。由于一个以上的二抗可以与一抗结合,荧光信号被放大,提供了更高的检测灵敏度。免疫荧光技术可以用于研究遗传疾病和基因表达调控。

免疫荧光注意事项:对照实验的设置:1、内源性组织背景对照:某些细胞和组织可能有固有的生物学性质,会产生背景荧光,对结果产生影响,例如色素脂褐质。因此在孵育一抗前,应对样品进行观察,确保抗原本身没有信号。2、阳性对照:用确认含有待测抗原的组织或细胞,与待测标本进行统一处理,结果应为阳性,可证明待测抗原有一定活性并且实验过程中用的试剂及方法均可靠。3、阴性对照:与阳性对照相反,用明确不含有待测抗原的细胞或组织切片染色,结果若为阴性,可排除染色过程中由于非特异性染色造成的假阳性结果。使用已知荧光抗原标记物质来检查相应抗体的方法被称为荧光抗原技术。CD36免疫荧光检查
荧光抗体技术可用于检测和定位各种抗原,也可以用于检测和定位抗体。HMGB1免疫
免疫荧光间接法:如检查未知抗原,先用已知未标记的特异抗体(一抗体)与抗原标本进行反应,用水洗去未反应的抗体,再用标记的抗抗体(第二抗体)与抗原标本反应,使之形成抗体—抗原—抗体复合物,再用水洗去未反应的标记抗体,干燥、封片后镜检。如果检查未知抗体,则表明抗原标本是已知的,待检血清为一抗体,其它步骤的抗原检查相同。标记的抗抗体是抗球蛋白抗体,同于血清球蛋白有种的特异性,如免疫抗鸡血清球蛋白只对鸡的球蛋白发生反应,因此,制备标记抗体适用于任何抗原的诊断。HMGB1免疫