通过EndoS糖苷内切酶S进行糖蛋白的糖链结构分析通常涉及以下步骤:1.**样本准备**:首先,需要获得糖蛋白的纯化样本,以确保分析的准确性。2.**酶的准备**:准备适量的EndoS糖苷内切酶S,根据实验需要选择合适的浓度和缓冲体系。3.**酶切反应**:-将糖蛋白样本与EndoS酶混合,在适宜的条件下(如pH、温度等)进行酶切反应。-反应时间根据EndoS的活性和所需的切割程度来确定。4.**终止反应**:在达到预期的酶切时间后,通过加热或添加适当的缓冲液来终止酶切反应。5.**分离纯化**:-使用色谱技术(如凝胶渗透色谱、离子交换色谱等)将酶切后的糖蛋白和释放的糖链分离。-纯化过程可能需要多步色谱以确保糖链的纯度。6.**糖链分析**:-对分离得到的糖链进行进一步的结构分析,可能包括质谱分析、核磁共振(NMR)波谱分析等。-可以使用高分辨率的质谱技术,如MALDI-TOF或ESI-MS,来确定糖链的精确质量。7.**序列鉴定**:通过与已知糖链数据库比对,确定糖链的序列和结构。8.**功能分析**:研究酶切后的糖蛋白和释放的糖链对生物活性的影响,如结合特性、免疫原性等。9.**数据分析**:收集所有数据并进行综合分析,以揭示糖链结构与功能之间的关系。
PreScissionProtease(PSP)是一种在蛋白质纯化和分析中使用的酶,具有以下特点:1.**特异性识别**:PSP能在低温(4°C)下特异性识别八肽序列Leu-Glu-Val-Leu-Phe-Gln-Gly-Pro或五肽序列Leu-Phe-Gln-Gly-Pro,并在Gln和Gly之间进行酶切。2.**应用**:PSP常用于去除融合蛋白中的GlutathioneS-transferase(GST)、His等标签,有助于纯化目的蛋白。3.**纯度高**:PSP的纯度达到95%以上,确保了实验的准确性和重复性。4.**稳定性好**:PSP在含有50%甘油的储存缓冲液中,-80℃长期储存,有效期2年;小量分装-20℃保存,有效期6个月。5.**酶活定义**:在5℃条件下反应16小时,能够切割100μg的GST标签蛋白达90%以上所需的酶量定义为一个活性单位。6.**兼容性强**:PSP的酶切体系中可以兼容1%TritonX-100、Tween-20或NP-40,10mMEDTA和500mMNaCl。7.**注意事项**:某些化合物如100mMZnCl2、4mMAEBSF和100μMChymostatin会抑制PSP的酶活性50%以上。8.**优化酶切效率**:建议进行预实验摸索实验浓度,实际操作中,建议酶用量1:25-1:100U/μg融合蛋白。Recombinant Human SCF Protein牛痘DNA拓扑异构酶I具有解超螺旋的活性,可以解开双链闭合环状DNA的超螺旋结构,便于后续的酶切反应。
IdeSProtease是一种免疫球蛋白G(IgG)特异性降解酶,它能够在IgG的铰链区下方的一个特定位点进行切割,产生F(ab')2和Fc片段。这种酶是通过大肠杆菌(E.coli)表达系统重组表达生产的,并且经过分子改造,使其具有更高的酶活和更广的底物特异性。在生产过程中,确保IdeSProtease符合GMP(良好生产规范)标准,需要进行以下步骤:1.**分子改造**:通过分子生物学技术对IdeS进行改造,增强其稳定性和比活性。2.**大肠杆菌表达系统**:利用大肠杆菌表达系统进行IdeS的重组表达,确保无动物源性成分,减少病毒污染风险。3.**纯化**:通过高度纯化过程,确保IdeS的纯度达到≥95%。4.**酶活定义**:1个酶活力单位定义为在37°C条件下,30分钟内酶切1μg重组单克隆IgG所需的酶量。5.**质量控制**:每批产品都经过严格的质量控制,以确保产品批间稳定性和高稳定性。6.**储存条件**:采用适当的储存条件,如-30℃至-10℃冻存,确保产品在有效期内保持活性和稳定性。7.**微生物学安全性检测**:进行无菌检测、体内有毒物质的检测、抗生物质残留检测、宿主细胞蛋白残留检测和病毒安全性检测,确保产品符合微生物学安全性要求。
检测重组EGFP(增强型绿色荧光蛋白)的活性和稳定性通常涉及一系列生物化学和分子生物学实验方法。以下是一些常用的检测方法:1.**SDS-PAGE电泳**:-通过SDS-PAGE电泳分析EGFP的纯度和分子量。-观察是否有蛋白质降解或聚合的迹象。2.**WesternBlot**:-使用特异性的GFP抗体进行Westernblot,以检测EGFP蛋白的存在和大小。-可以评估EGFP的表达水平和纯度。3.**荧光光谱分析**:-使用荧光光谱仪测量EGFP的激发和发射光谱。-评估荧光强度和比较大激发/发射波长,以确定其荧光特性。4.**流式细胞仪分析**:-如果EGFP融合蛋白表达在细胞中,可以使用流式细胞仪分析细胞群体的荧光强度。-这有助于评估EGFP的表达水平和细胞内分布。5.**荧光显微镜观察**:-在荧光显微镜下观察EGFP的亚细胞定位和表达模式。-通过时间序列成像,可以评估EGFP在活细胞中的动态变化和稳定性。6.**热稳定性分析**:-通过逐渐升高温度并测量荧光强度的变化,可以评估EGFP的热稳定性。-热稳定性差的EGFP可能会在高温下迅速失去活性。7.**光稳定性测试(光漂白实验)**:-通过持续光照并监测荧光强度的下降(光漂白),可以评估EGFP的光稳定性。泛素分子可以通过其内部的赖氨酸残基与其他泛素分子形成多聚泛素链,这一步骤通常由E3酶催化。
IdeSProtease的分子改造技术主要通过以下几个方面提高其稳定性和比活性:1.**定向进化**:利用定向进化方法,通过多轮的突变和筛选,获得具有改善特性的酶变体。定向进化不依赖于大规模突变文库的构建,而是通过定点突变操作,显著提高酶分子的稳定性。2.**半理性设计与理性设计**:结合半理性设计和理性设计的方法,通过计算模拟和结构分析,对酶的三维结构进行优化,以提高其在各种环境条件下的稳定性。3.**糖基化修饰**:作为一种新的酶分子稳定性改造技术,糖基化可以提高酶的稳定性,防止酶在逆境中的失活,从而提高其在实际应用中的催化活性。4.**消除蛋白质中的不稳定性弱点**:通过分析蛋白质结构中的稳定性弱点,进行定点突变,以增强蛋白质的整体稳定性。5.**提高比活性**:通过分子改造,提高IdeSProtease的比活性,使其在更低的浓度下就能有效地催化反应,从而提高整体的催化效率。6.**增加底物特异性**:改造后的IdeSProtease除了可以切割人IgG1~4、猴、羊、兔IgG外,还对小鼠IgG2a、IgG3具有特异性切割活性。。
在目标蛋白的C末端添加His标签和Avi标签。有助于通过亲和层析进行蛋白纯化,而Avi标签则可以用于生物素。Recombinant Human Interferon omega-1 Protein,His Tag
通过SDS-PAGE(聚丙烯酰胺凝胶电泳)和Westernblot(西方印迹)可以有效地检测带有His标签的泛素蛋白的纯度和完整性。以下是进行这些检测的步骤:###SDS-PAGE步骤:1.**样品准备**:-将重组泛素蛋白溶解在适当的缓冲液中,通常含有还原剂(如DTT或β-巯基乙醇)以断裂二硫键。-将样品在95-100°C下加热5分钟以变性蛋白质。2.**凝胶准备**:-根据需要的分辨率选择合适的凝胶浓度(例如,12%或15%凝胶用于检测20-100kDa的蛋白质)。3.**上样**:-将变性后的样品加入到凝胶的相应孔中,同时加入分子量标记物作为参照。4.**电泳**:-在恒定电压或恒定电流下进行电泳,直到样品在凝胶中充分分离。5.**染色**:-使用考马斯亮蓝或其他蛋白质染色剂对凝胶进行染色,以可视化蛋白质条带。6.**分析**:-通过比较样品条带与分子量标记物,评估蛋白质的分子量和纯度。###Westernblot步骤:1.**转膜**:-将SDS-PAGE分离的蛋白质从凝胶转移到PVDF或硝酸纤维素膜上。2.**封闭**:-使用封闭液(如5%脱脂奶粉或1%BSA溶液)封闭膜上未被蛋白占据的部分,以减少非特异性结合。3.**一抗孵育**:-使用特异性识别His标签的抗体(一抗)与膜上的蛋白质孵育,通常在4°C过夜。Recombinant Human Interferon omega-1 Protein,His Tag
Recombinant Cynomolgus TNF alpha Protein
Recombinant Mouse IGF1R/CD221 Protein
Recombinant Human PKC iota Protein
Recombinant Mouse CD79B Protein
Recombinant Biotinylated Mouse TNFSF15 Protein
Recombinant Cynomolgus LRIG1 Protein
Recombinant Human TNFR2/CD120b/TNFRSF1B(His Tag)
Recombinant Cynomolgus NKp46/NCR1/CD335 Protein
Recombinant Human Histone H2A type 3 Protein
Recombinant Mouse WISP1 Protein