甘肃大鼠实验动物模型推荐

二型糖尿病实验动物模型：胰岛素抵抗和胰岛β细胞的功能缺陷胰岛素分泌异常

诱导方法一：小剂量STZ加高脂饲料诱导糖尿病模型。高脂饲料喂养4周后，腹腔注射STZ（30mg/kg），1周后选空腹血糖大于11.1mmol/L。

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诱导方法二：转基因老鼠db/db小鼠：糖尿病小鼠(C57BL/KsJdb/dbmouse)也为Jackson实验室于1966年在C57BLKS/J(BKS)近交系中发现的自发性突变小鼠，该小鼠高糖、多尿及高尿糖水平的表型与人类的糖尿病患者非常相似。在10～14天出现高胰岛素血症，3～4周明显肥胖，在10周时可达野生小鼠的2～3倍，但身长比野生型短5％，并有高胆固醇血症和高甘油三酯血症。4～8周出现高糖血症，且表现出多食、消渴、多尿的典型糖尿病临床表现。 实验动物模型的造模方法？甘肃大鼠实验动物模型推荐

常见自发性实验动物模型1.免疫缺陷动物疾病模型1）B淋巴细胞缺陷疾病模型CBA/A小鼠，起源于CBA/H品系，特点是B淋巴细胞功能减退，为X-链隐性突变系，基因符号是Xid。临床表现为免疫球蛋白缺失，细胞免疫正常。2）T淋巴细胞缺陷疾病模型裸小鼠，主要特征为无毛、裸着的、无胸腺和细胞免疫功能丧失，由于第十一对染色体上等位基因突变引起。该鼠免疫能力低，易传染，生长不良，繁殖力低。这种动物能接受同种或异种组织移植，包括人cancer异种移植，可作为cancer免疫研究。国内常用裸小鼠品系为BALB/Cnu/nu,Swissnu/nu和NCnu/nu等，维持费较高。现也有裸大鼠、裸豚鼠等。图片2.自发性糖尿病动物模型KK糖尿病小鼠属先天遗传缺陷性小鼠。该鼠对胰岛素不敏感、对葡萄糖耐性小、糖尿病发病率高、老年鼠偶见肥胖。BBWistar大鼠是一种典型自发遗传Ⅰ型（胰岛素依赖性）糖尿病，发病率50-70%，临床表现为多饮、多食、gao血压、酮症、胰岛内β-细胞大量破坏等。NIH肥胖大鼠(SHR/N-cp)是新培育的一种用于肥胖和糖尿病研究的动物模型，表现出与人非胰岛素依赖性糖尿病相似的代谢改变。江苏构建实验动物模型哪家好实验动物模型公司靠谱吗？

诱发性动物模型物理因素诱发的动物模型(physicalanimalmodels)：是指用常见的物理方法如机械损伤、放射线、气压、手术等复制的动物模型。例如外科手术复制的大鼠急性肝衰和肺水肿动物模型，放射线复制的放射病等。化学因素诱发的动物模型(chemicalanimalmodels)是指用化学的方法复制的动物模型，如化学致cancer、化学中毒、强酸碱烧伤、某种有机成分的增或减导致营养性疾病等复制的动物模型。微生物因素诱发的动物模型(microorganismanimalmodels)：是指用常见的生物方法，如细菌、病毒、寄生虫等复制的模型。例如柯萨奇B病毒复制大、小鼠、猪等心肌炎模型；志贺杆菌复制猴的细菌。复合因素诱发的动物模型(complexanimalmodels)：是指两种以上的方法复制的模型。例如，大鼠或豚鼠的慢支：细菌+寒冷烟+寒冷细菌+SO2；大鼠肝硬化：CCl4、胆固醇、乙醇等因素来复制；大鼠cancer：二甲基偶氮苯胺+γ-射线。生物技术制作的动物模型(biotechnicalanimalmodels)：是指利用动物卵或胚胎移植、胚胎嵌合、细胞核移植、转基因、基因敲除、RNAi干扰和克隆等生物技术复制的模型。

心血管疾病实验动物模型，英瀚斯生物小编为您介绍：1）动脉性粥样硬化动物模型常选用兔、猪、大鼠、鸡、鸽、猴和狗等。常用的方法有高胆固醇、高脂肪饲料法，免疫学法、儿茶酚胺药物注射法等。兔的优点为敏感性高，容易造成模型，时间短，缺点为它的脂质代谢与人类不同，兔表现为血源性泡沫细胞增多，解剖分布以胸动脉为主，小动脉常有病变。猪与人类相似，结合胸X-线照射，可引起冠状动脉痉挛。2）心肌缺血和心肌梗死电刺激法，雄兔麻醉后，用弱、强电交替刺激（0.8-1.6mA及4-6mA）右侧下丘脑背侧核，即可形成心肌缺血模型；药物法，给大鼠或兔注射异丙肾上腺素，狗静脉注射麦角新碱复制冠状动脉痉挛；冠状动脉阻断法，用大鼠或狗麻醉，在冠状动脉套上压迫环，复制心肌缺血和心梗模型。3）高血ya疾病动物模型可采用肾包扎法及肾动脉缩窄法复制继发性高血ya，用噪声刺激复制神经性高血ya模型。小鼠实验动物模型都有哪些？

承接过的部分动物模型：消化系统胃溃疡模型大鼠胃炎模型新生鼠坏死性结肠炎模型慢性脂肪肝模型肝纤维化模型急性肝损伤模型肝硬化模型大鼠急性肝损伤模型肝切除模型肝缺血再灌注模型肝纤维化模型肝部分切除模型；呼吸系统OVA***模型慢性肺阻塞模型慢性阻塞性肺模型肺纤维化模型急性肺炎模型窘迫呼吸症模型泌尿生殖系统肾纤维化模型嘌呤霉素诱导的肾病模型急性肾衰竭模型尿毒症模型单侧肾切除模型大鼠子宫内膜异位症模型卵巢早衰模型肾小管坏死小鼠模型心血管系统小鼠***模型动脉钙化模型脑卒中模型（脑缺血再灌注模型）心肌缺血模型蛛网膜下腔出血模型脑出血模型肺动脉高压模型股动脉血管炎模型失血性贫血动物模型心肌梗死模型神经系统抑郁模型帕金森模型尼古丁戒断模型睡眠剥夺模型大鼠癫痫模型阿尔兹海莫（AD）症模型大（小）鼠水迷宫实验内分泌系统糖尿病模型（Ⅰ、Ⅱ糖尿病）卵巢早衰模型、多囊卵巢模型大鼠甲状腺功能亢进症免疫疾病小鼠关节炎模型（CIA）桥本甲状腺炎模型（HT）多样硬化模型（EAE）裸鼠成瘤模型裸鼠皮下成瘤模型肾原位*模型肝原位*模型胃原位*模型肠原位*模型膀胱原位*模型肺原位*模型其他模型骨质疏松模型股骨头坏死模型骨性关节炎模型 实验动物模型设计，评估，报价，欢迎咨询英瀚斯生物。浙江承接实验动物模型制作方法

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实验动物模型的灌注取材方法：

小鼠灌注灌流

固定小鼠时我一般采用输液器的针头(4号半，这样肉眼可见就是肺部明显充气胀大变白，针头要从心轴方向进针，刺入心尖3~4毫米左右就可以了，开始灌流后剪破右心耳，约40毫升生理盐水，后再灌流约20毫升多聚甲醛，整个灌流固定的过程就完成了。

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大鼠灌注

按大鼠体重，用2%戊巴，比妥钠（0.25ml/100g）进行腹腔注射麻醉，开胸暴露心脏，向左心室内注射1%肝素钠0.2ml后经左心室行主动脉插管，血管钳固定后剪开右心耳，先以生理盐水150ml快速冲洗血管，然后用4%多聚甲醛的0.01mol/LPBS（4℃，PH7.40）250ml灌注固定，先快后慢，共需时间为50min，之后取材，置4%多聚甲醛固定液后固定，在4℃冰箱内保存。多聚甲醛进入大鼠体内，大鼠会出现四肢、尾的抽搐，**终以肝脏发白、内脏鼓起即灌注好。 甘肃大鼠实验动物模型推荐