对细胞活力的影响：一些研究表明，在阳离子脂质体LipofectamineTM2000介导下鸡TRPV6基因RNA干扰（RNAi）质粒转染入成骨细胞的实验中，当转染前细胞融合达到90％以上，质粒DNA与脂质体比例为1:2.5时转染效率比较高，并且在转染后48h转染效果比较好，对细胞的毒性作用较小3。在人肝瘤两种细胞模型中，通过比较LipofectamineRnaimax和Genmute转染剂发现，用基因***的细胞呈现荧光阴性对照siRNA的更高摄取，并且观察到与基因转染的细胞相对于脂质积rnaimax的细胞具有较高的活力6。有研究使用两种常见的RNA干扰（RNAi）转染试剂DharmaFECT1和INTERFERin，在模拟转染中使用非靶向siRNAs，结果表明这些试剂会引起HeLa细胞脂质组的变化，但功能影响仍有待研究，这也暗示在RNAi实验中使用适当的模拟转染对照非常重要。
人类原代干细胞是另一种公认的难以转染的细胞类型，转染这种细胞类型的挑战仍然是效率低和细胞活力低。河南jetPEI 转染试剂
对于容易转染的贴壁细胞如人胚肾细胞（HEK293）和人宫颈*细胞（HeLa），脂质体转染效率相对较高。这些细胞具有较强的内吞能力，能够有效地摄取脂质体-核酸复合物。例如，在标准的转染条件下，HEK293细胞的转染效率可以达到50%-70%。而对于一些难转染的贴壁细胞，如原代肝细胞和某些神经细胞，其转染效率较低。这是因为它们的细胞膜结构比较复杂，可能存在较厚的糖萼或者紧密的细胞间连接，阻碍了脂质体-核酸复合物的进入。例如，原代肝细胞的转染效率可能只有10%-20%。
一般来说，贴壁细胞对脂质体的耐受性相对较好。但是，在高浓度脂质体转染的情况下，即使是耐受性好的细胞也会受到影响。例如，HeLa细胞在高浓度脂质体转染时，可能会出现细胞膜完整性受损，表现为细胞内乳酸脱氢酶（LDH）释放增加，细胞的代谢活动也会受到一定程度的干扰。对于难转染的贴壁细胞，由于其本身比较脆弱，较低浓度的脂质体也可能产生明显的细胞毒性。比如原代神经细胞，脂质体可能会破坏其精细的神经突起结构，影响细胞的正常生理功能。 云南转染试剂效率高纳米颗粒，由于其在DNA转运到细胞中的保护能力，在不久的将来可以用作转基因的非病毒载体。
二、影响因素的差异细胞接种密度：不同类型的细胞在比较好转染效率下的细胞接种密度不同。例如，宫颈*细胞Hela和Siha的比较好接种密度为每24孔板的每孔1.5×10⁴个细胞1，而研究中Caco-2细胞的比较好接种密度为2×10⁵9。DNA用量：各种细胞所需的DNA用量也存在差异。如PC12细胞转染的比较好DNA用量为2μg3，而Caco-2细胞转染时比较好DNA用量为4μg9。脂质体与DNA的比例：不同细胞类型对应的比较好脂质体与DNA的比例不同。Hela细胞中miRNA与脂质体比例为1:0.5，Siha细胞中为1:0.71；Caco-2细胞转染时比较好脂质体与DNA比例为2.5:19。复合物形成时间和孵育时间：不同细胞类型对脂质体-DNA复合物的形成时间和细胞与复合物的孵育时间要求不同。例如，Hela和Siha细胞未明确提及复合物形成时间和孵育时间，而Caco-2细胞的比较好脂质体-DNA复合物形成时间为30min，细胞与复合物孵育时间为6h9。
鸡胚成纤维（CEF）细胞、293细胞、PK细胞和MDCK细胞：在RNA干涉中，转染试剂的用量与siRNAs的量成正相关关系，但转染试剂对细胞有一定毒性作用。相同用量的RNAiFectTM和SuperFect两种转染试剂对293细胞、PK细胞和MDCK细胞的生长影响远远小于对CEF细胞的影响。两种转染试剂用于外源小分子转染时，建议在293细胞、PK细胞和MDCK细胞上的用量不超过3ul。两种转染试剂对CEF细胞的毒性较大，不适合用于转染111316。MEF细胞、3T3细胞、Hela细胞及MCF-7细胞：分别用RNAiMax及MessageMax将modGFP转染入MEF细胞，流式分析发现MessageMax的转染效率略高于RNAiMax，但两者没有统计学差异。但是流式分析和荧光显微镜观察均表明MessageMax转染后1周内的蛋白翻译表达效率更高，是更高效的modRNA转染试剂。MessageMax能将modGFP高效转染入3T3细胞、Hela细胞及MCF-7细胞中，并实现modGFP和modmCherry在MEF细胞中的共转及核内因子nGFP和mTBX5在MEF细胞核中的定位。基因注射包括通过注射将所需的核酸物质直接输送到宿主细胞核中。
转染试剂用量：转染试剂的用量是影响转染效率的重要因素之一。过多或过少的转染试剂都可能导致转染效率降低。在阳离子脂质体Lipofectamine2000对PC12细胞的转染实验中，发现lipo2000用量为5μL，DNA2μg，转染时间为6h时，PC12细胞转染率高达40%，且未影响细胞的正常分泌3。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，研究了细胞接种密度、DNA用量、脂质体与DNA的比例等因素对脂质体转染效率的影响。结果表明，2-5次细胞传代，2×105接种密度、4μgDNA用量、2.5:1的脂质体与DNA比例、30min脂质体-DNA复合物形成时间以及6h细胞与复合物孵育时间，转染效率比较高9超声辅助转染涉及在宿主细胞膜上制造微小的孔，以促进核酸(包括DNA和RNA)的传递。中国香港转染试剂指导
选择合适的转染试剂可能取决于几个因素，包括转染核酸的类型和转染的复杂性(单转染或共转染)。河南jetPEI 转染试剂
非人灵长类动物是神经科学研究的重要动物模型，超高场磁共振脑成像技术在非人灵长类动物研究中具有重要作用。非人灵长类动物超高场磁共振脑成像技术进展：徐斌、高阳、王菁综述了非人灵长类动物超高场磁共振脑成像应用、面临的技术挑战以及当前的技术解决方案等3。磁共振脑成像技术是目前**主要的非侵入式大脑神经信号探测手段，非人灵长类动物磁共振脑成像研究对于深入理解磁共振脑成像生理机制、研发定量生理探测技术、神经科学基础研究、心理学以及临床病理机制研究等都具有重要作用。但非人灵长类动物磁共振脑成像面临着缺少适配商用系统、需要更高成像分辨率以及对多样化动物实验需求兼容性等技术挑战。超高场磁共振具有高信噪比、高脑血氧水平依赖信号检测灵敏度和亚毫米级高分辨率成像能力等优势，有潜力应用于非人灵长类动物超高分辨率脑成像研究。河南jetPEI 转染试剂