联合使用其他技术优化DNA和RNA转移的转染试剂在肌肉细胞中的应用：在C2C12细胞中，比较了五种商业转染试剂（Lipofectamine®3000、Viafect™、Fugene®HD、C2C12CellAvalanche®和JetOPTIMUS®）的转染效率7。通过优化DNA:转染剂比例和细胞密度，所有试剂都达到了超过60%的转染效率，且对细胞生长和活力的影响有限。然而，在C2C12细胞中优化的用于DNA转移的条件下，这些试剂对siRNA的转移效率较低，并且对原代肌肉细胞的毒性较高。这提示在使用转染试剂时，可以通过联合使用其他技术或优化转染条件，以提高转染效率并降低细胞死亡。例如，可以进一步研究不同试剂之间的联合使用，或者优化转染后的培养条件，以降低细胞毒性。综上所述，在不同细胞模型中提高RNA转染试剂的转染效率同时降低细胞死亡，可以通过选择合适的转染试剂、优化转染条件以及联合使用其他技术等方法来实现。未来的研究可以进一步深入探讨不同细胞模型中比较好的转染策略，以满足不同研究领域的需求。在腺病毒载体或脂质体的全身递送后，转基因表达相对短暂。青海转染试剂脂质体
三、脂质体组成对转染效率的影响不同脂质组成的影响：研究发现脂质体的组成对不同类型细胞的转染效率有影响。例如，四种不同的DOTAP与DOPE重量比的脂质体配方对不同细胞系的转染效率不同。Huh7和AGS细胞的比较好脂质体组成是T1P0和T3P1；COS7细胞是T3P1和T1P1；A549细胞是T1P1和T1P36。脂质体结构的影响：脂质体复合物的形状会随着DOPE比例的增加从层状结构变为倒六角形结构，但在所有使用的细胞系中，特定结构在转染效率上没有明确的优势6。四、其他因素的影响血清的影响：对于某些细胞，血清的存在会影响转染效率。如Siha细胞在无血清培养基中培养时转染效率更高，而在Caco-2细胞的转染中，血清在本实验室条件下并不影响转染效率19。细胞传代次数：Caco-2细胞在2-5次细胞传代时转染效率比较高9。综上所述，脂质体转染对不同类型细胞的影响存在多方面的差异，包括转染效率、影响因素以及脂质体组成等。在进行脂质体转染实验时，需要根据不同的细胞类型优化转染条件，以获得比较好的转染效果。浙江西安转染试剂基因注射包括通过注射将所需的核酸物质直接输送到宿主细胞核中。
对细胞活力的影响：一些研究表明，在阳离子脂质体LipofectamineTM2000介导下鸡TRPV6基因RNA干扰（RNAi）质粒转染入成骨细胞的实验中，当转染前细胞融合达到90％以上，质粒DNA与脂质体比例为1:2.5时转染效率比较高，并且在转染后48h转染效果比较好，对细胞的毒性作用较小3。在人肝瘤两种细胞模型中，通过比较LipofectamineRnaimax和Genmute转染剂发现，用基因***的细胞呈现荧光阴性对照siRNA的更高摄取，并且观察到与基因转染的细胞相对于脂质积rnaimax的细胞具有较高的活力6。有研究使用两种常见的RNA干扰（RNAi）转染试剂DharmaFECT1和INTERFERin，在模拟转染中使用非靶向siRNAs，结果表明这些试剂会引起HeLa细胞脂质组的变化，但功能影响仍有待研究，这也暗示在RNAi实验中使用适当的模拟转染对照非常重要。
调节免疫刺激特性鱼精蛋白稳定的RNA还可以调节免疫刺激特性。鱼精蛋白-RNA复合物可以刺激树突状细胞（DC），使其上调成熟标志物，并以剂量依赖的方式产生促炎性细胞因子1213。此外，两个DC亚群均以与IL-10有利的比率诱导T细胞增殖和IFNγ分泌1213。这表明鱼精蛋白-RNA复合物可用于离体刺激人mDC和pDC，用于免疫***环境1213。四、灵活的RNA递送系统平台鱼精蛋白作为RNA递送稳定剂，构建了一个灵活且多功能的平台。可以根据***目标进行调整，例如可以与靶向抗体融合实现精确递送，或者被消化成细胞穿透肽以提高转染效率，也可以与功能性聚合物非共价混合23。综上所述，鱼精蛋白作为RNA递送稳定剂，通过保护RNA免受降解、增强细胞穿透性、调节免疫刺激特性以及构建灵活的递送系统平台等多种机制，在RNA递送中发挥着重要作用。阳离子脂质体合成中常用的分子是中性脂质二油基磷脂酰乙醇胺(DOPE)。
emlikiForestvirus相关细胞：利用基于SemlikiForestvirus的RNA和DNA向量研究非病毒细胞穿透肽递送载体PepFect6与阳离子脂质体Lipofectamine2000的转染效率，并评估它们对病毒复制的影响。结果表明，PepFect6***证明能够将大（13-19kbp）构建体转运穿过细胞膜。但使用PepFect6试剂递送的DNA分子被发现比使用Lipofectamine2000试剂递送的DNA分子晚约。***，虽然PepFect6和Lipofectamine2000试剂都可用于alphavirus研究，但PepFect6更受青睐，因为它不会引起正常细胞表型的变化，也不会影响先前转染细胞中病毒的正常复制***周期12。奶牛子宫内膜原代上皮细胞：应用带有FAM标记的miRNA-185mimics为报告基因，检测两种不同转染试剂（LipofectamineRNAiMAX与Lipofectamine2000）在细胞接种12、18、24h后的转染效率。结果显示，无论使用Lipofectamine2000还是LipofectamineRNAiMAX作为奶牛子宫内膜原代上皮细胞的转染试剂，各组间12h的转染效率均极***高于18、24h，18h的转染效率均极***高于24h；LipofectamineRNAiMAX各时间点的转染效率均极***高于Lipofectamine2000。使用LipofectamineRNAiMAX作为奶牛子宫内膜原代上皮细胞的转染试剂时，12h的荧光强度极***高于18、24h。 不同种类的纳米颗粒转染细胞系后，产生不同的效率、毒性和组织特异性。浙江西安转染试剂
评估转染效率至关重要，特别是在需要高转染效率以保证特定下游靶标转录后调控的功能研究中。青海转染试剂脂质体
转染时间：转染时间的长短也会影响转染效率。过长或过短的转染时间都可能导致转染效率降低。在阳离子脂质体Lipofectamine2000对PC12细胞的转染实验中，转染时间为6h时转染效率较高3。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好转染时间为24小时1。细胞接种密度：细胞接种密度也会影响转染效率。过高或过低的细胞接种密度都可能导致转染效率降低。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，2×105接种密度时转染效率比较高9。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好接种密度分别为1.5×104（每孔24孔板）1。血清的有无：血清的存在可能会影响脂质体转染效率。一些实验表明，血清可能会降低转染效率，而另一些实验则表明血清对转染效率没有影响。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，与含血清培养基相比，只有Siha细胞在无血清培养基中培养时在转染前获得了更高的转染效率（P＜0.01）1。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，血清在本实验室条件下并不影响转染效率。青海转染试剂脂质体