在ADCs(抗体药物偶联物)的制备过程中,确保药物的稳定性和生物活性是至关重要的。以下是几个关键步骤和技术要点:1.**药物抗体比(DAR)的控制**:DAR是影响ADC稳定性的关键因素。通过控制DAR和药物负荷分布,可以促进ADC的稳定性。DAR值在2-4之间通常被认为是好的选择,但后面的DAR值需要通过稳定性试验、体内有效性和药代动力学共同决定。2.**连接子的选择**:连接子在化学过程中、血浆循环以及产品储存过程中的稳定性非常关键。连接子的选择决定了抗体药物的DAR,并且连接子的稳定性影响着ADC的整体稳定性。3.**有效载荷的选择**:有效载荷对ADC的毒性和生物活性至关重要。选择具有高度细胞毒性且能在靶细胞内有效释放的有效载荷是必要的。同时,有效载荷及其代谢形式决定了ADC分子的毒性。4.**制剂配方的优化**:ADC的制剂配方需要考虑抗体、连接子和有效载荷的稳定性和特性。pH值、缓冲液、离子强度、表面活性剂和抗氧化剂等都可能影响ADC的稳定性。5.**避免聚集**:ADC的聚集倾向比单独的抗体更高,因此需要采取措施减少聚集,如使用非离子表面活性剂和优化冻干工艺。
重组的化脓性链球菌Cas9蛋白(SpCas9)是一种用于基因组编辑的核酸酶。它是CRISPR-Cas系统的一部分,该系统是一种细菌和古菌的适应性免疫防御机制,能够识别并切割入侵的外源核酸。Cas9蛋白在CRISPR系统中起到关键作用,它能够识别特定的原间隔子相邻基序(PAM),在引导RNA(gRNA)的引导下与目标DNA结合并进行切割。SpCas9蛋白由1053个氨基酸组成,相对较小的体积使其便于在体内递送,因此它在多种生物中都能进行有效的基因组编辑。为了提高SpCas9的表达量和溶解度,研究人员采用了多种策略,例如使用GB1促溶标签和多重启动子策略,这些策略可以显著提高蛋白的产量和活性,同时保持其功能活性不受影响。在基因编辑过程中,SpCas9与gRNA形成稳定的核糖核的蛋白(RNP)复合物,通过gRNA与基因组DNA的序列匹配来识别目标位点,并在距离NGGPAM序列3个碱基以内的位置切割DNA。为了增强SpCas9的基因组编辑效率,研究人员还开发了嵌合融合蛋白,例如与5’至3’核酸外切酶重组J(RecJ)或GFP融合的SpyCas9蛋白,这些嵌合蛋白可以显著提高靶向基因编辑效率,同时保持较低的脱靶效应。
在蛋白质糖基化分析中,除了N-糖苷酶F(PNGaseF),还有其他几种酶也发挥着重要作用,具有各自的优势:1.**EndoH糖苷内切酶H**:这种酶可以水解高甘露糖型N-连接糖链,通常用于区分高甘露糖型和复杂型糖链。2.**EndoS糖苷内切酶S**:EndoS能够从IgG重链的壳二糖结构之间切除N-连接糖,有助于分析抗体的糖基化模式。3.**FastPNGaseF**:这是一种经过优化的PNGaseF,能在数分钟内对抗体、免疫球蛋白、融合蛋白以及其他糖蛋白进行彻底和快速的去糖基化,简化了实验流程,同时保持了灵敏度和重复性。4.**O-糖苷酶O-glycosidase**:用于去除O-连接的糖链,这对于O-糖基化蛋白质的分析至关重要。5.**三氟甲基磺酸(TFMS)法**:这是一种化学去糖基化方法,可以用于释放糖链,尤其在某些难以使用酶法去除糖链的情况下。6.**质谱法**:虽然不是酶,但质谱法是分析糖链结构的强大工具,可以结合酶法或化学法释放的糖链进行详细分析。7.**核磁共振法(NMR)**:NMR技术可以确定糖链的构型、连接位置、分支和微观多样性,是糖链立体化学结构分析的重要方法。这些酶和方法各有优势,可以根据实验的具体需求和糖基化类型的不同进行选择,以获得比较好的分析结果。
EndoS酶在抗体药物偶联物(ADCs)研究中的具体应用主要体现在糖链定点偶联技术方面。根据上海药物研究所的研究进展,EndoS酶被用于实现定点ADC化合物的“一步”制备,这是一种新颖的糖链定点ADC制备策略。该策略利用了新颖截短型糖结构的药物-连接子和野生型糖苷内切酶EndoS2,将小分子细胞毒药物直接定点连接到抗体糖基化位点,从而克服了传统糖链定点ADC制备策略的限制。具体来说,研究人员通过筛选发现,EndoS2酶可以将二糖底物LacNAc转移至去糖抗体N297位糖基化位点,并且LacNAc半乳糖6号位唾液酸化修饰不影响EndoS2的转糖基化活性。这一发现使得EndoS2和LacNAc的组合可以直接实现野生型抗体的糖基化改造,且EndoS2对多样化LacNAc修饰的兼容性,可以高效获得多样性功能修饰的岩藻糖化或去岩藻糖化的糖工程抗体。此外,研究人员还利用叠氮化修饰的LacNAc底物实现了抗体糖基化位点的“一步”叠氮化修饰,并通过点击化学反应偶联药物-连接子,实现了“两步”制备得到定点ADC化合物。
PNGaseF,Recombinant,ExpressedinYeast(酵母重组表达N-糖苷酶F)的高效性体现在以下几个方面:1.**高比活性**:该酶具有高比活性,例如可达到750,000U/mL,这意味着单位体积的酶可以进行更多的反应循环,从而提高去糖基化的效率。2.**快速反应**:与传统PNGaseF相比,某些优化版本的PNGaseF,如FastPNGaseF,能在更短的时间内完成去糖基化,要10分钟。3.**彻底去糖基化**:该酶能迅速且无偏好性地去除几乎所有N-连接的寡糖,包括高甘露糖型、杂合型和复杂型糖链,确保了去糖基化的彻底性。4.**直接分析**:去糖基化后的产物可以直接用于下游的色谱或质谱分析,无需额外的纯化步骤,从而节省时间并提高分析的效率。5.**适用性**:适用于多种糖蛋白的去糖基化,包括抗体、免疫球蛋白、融合蛋白以及其他糖蛋白,增加了该酶的实用性。6.**优化的反应条件**:可以在变性或非变性条件下使用,增加了实验设计的灵活性,并允许在不同条件下优化去糖基化效率。7.**简化的实验流程**:由于酶的高效性,实验流程得以简化,减少了反应体积和酶的使用量,同时保持了反应的灵敏度和重复性。
牛痘DNA拓扑异构酶I的反应温度为37°C。在这个温度下,酶的活性高,能够有效地进行DNA的切割和连接。Recombinant Mouse NGAL/Lipocalin-2 Protein,hFc Tag
通过SDS-PAGE(聚丙烯酰胺凝胶电泳)和Westernblot(西方印迹)可以有效地检测带有His标签的泛素蛋白的纯度和完整性。以下是进行这些检测的步骤:###SDS-PAGE步骤:1.**样品准备**:-将重组泛素蛋白溶解在适当的缓冲液中,通常含有还原剂(如DTT或β-巯基乙醇)以断裂二硫键。-将样品在95-100°C下加热5分钟以变性蛋白质。2.**凝胶准备**:-根据需要的分辨率选择合适的凝胶浓度(例如,12%或15%凝胶用于检测20-100kDa的蛋白质)。3.**上样**:-将变性后的样品加入到凝胶的相应孔中,同时加入分子量标记物作为参照。4.**电泳**:-在恒定电压或恒定电流下进行电泳,直到样品在凝胶中充分分离。5.**染色**:-使用考马斯亮蓝或其他蛋白质染色剂对凝胶进行染色,以可视化蛋白质条带。6.**分析**:-通过比较样品条带与分子量标记物,评估蛋白质的分子量和纯度。###Westernblot步骤:1.**转膜**:-将SDS-PAGE分离的蛋白质从凝胶转移到PVDF或硝酸纤维素膜上。2.**封闭**:-使用封闭液(如5%脱脂奶粉或1%BSA溶液)封闭膜上未被蛋白占据的部分,以减少非特异性结合。3.**一抗孵育**:-使用特异性识别His标签的抗体(一抗)与膜上的蛋白质孵育,通常在4°C过夜。Recombinant Mouse NGAL/Lipocalin-2 Protein,hFc Tag
Recombinant Cynomolgus TNF alpha Protein
Recombinant Mouse IGF1R/CD221 Protein
Recombinant Human PKC iota Protein
Recombinant Mouse CD79B Protein
Recombinant Biotinylated Mouse TNFSF15 Protein
Recombinant Cynomolgus LRIG1 Protein
Recombinant Human TNFR2/CD120b/TNFRSF1B(His Tag)
Recombinant Cynomolgus NKp46/NCR1/CD335 Protein
Recombinant Human Histone H2A type 3 Protein
Recombinant Mouse WISP1 Protein